DEG和TopVarGenes在DESEq2中的区别是什么?
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ecg1g15•0
@ecg1g15 - 19970
最后一次出现是六周前

我对在数据集中选择携带信号的顶级基因感兴趣。在这两种功能中,样本中最易变的基因之间有什么区别?

DEG <- sub (res, padj <0. 0): DEG <- sub (res, padj <0. 0)
  • 这是因为res得到了DESeq2没有VST变换的结果吗?
    • 在vst后获得DEG以获得正常化后最可变的基因有意义吗?(这是topVarGenes所做的)
    • 如果它们不同,用哪一个做什么?
DESeq2RRNASeqR•159年的观点
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你好,你在《生化之星》上是不是也问过同样的问题,还是我把自己搞糊涂了?

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抱歉,我有,我只是想太多了,因为我正在处理一个复杂的环境数据集,根据问题有无数的分析数据的方法,所以我应该简化目标并坚持它。

3.
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ATpoint•390年
@atpoint - 13662
最后一次出现是25分钟前
德国

这其实很简单。rowvar根据逐行方差选择基因,然后结果是基于整个微分表达式框架,这是描述在本文和小插图。后者在哪些基因有实际的统计支持是DE方面更可靠,而第一个是更多的快速/脏的特征选择,例如用于探索目的,如PCA。的和那个威仕特函数,而运行它是有意义的rowvar关于输出威仕特因为这修正了有偏的平均值/方差趋势,并将数据放到对数尺度上。如果您想要deg,那么请遵循小插图中的标准管道(其中明确提到了这一点威仕特没有在整个DE管道中使用),如果您想要QC /探索的快速特性选择,那么使用rowvar

编辑:哦,是的,之前问过:https://www.biostars.org/p/472945/

什么是你不清楚的,什么是你不明白的,事实上在biostars上有很多你问/评论的话题。不深思。我总是这样做:使用顶部变量基因进行快速初始QC,对于其他任何事情使用DEGs(热图,分类…)。你明白了吗?

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很抱歉我之前问过这个问题(什么问题应该在这里或Biostars中回答?)

我相信我理解了,而vst应用对数相似的转换用于可视化和聚类,用于差异表达和其他分析,DESEq有一个计数规范化步骤到库深度。

因此,提取一个包含规格化Deseq计数的data.frame,我怎么做?

#这似乎给了我原来的计数表norm_counts_dds <- as.data.frame(dds))
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我不是一个Bioc开发者,但我个人认为需要开发者专业知识的技术问题应该在这里发布,其他的都可以在biostars或StackExchange Bioinformatics等更一般的论坛上讨论。2021欧洲杯体育投注开户

你的要求都写在手册里了。简单点,使用vst就可以了。

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norm_counts_dds <- count (dds, norm_counts_dds, TRUE)

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